Беспозвоночные

(5 - количество проголосовавших)

altКак представители рода Heterometrus, так и представители рода Pandinus, обитают в тропических дождевых лесах Юго-Восточной Азии и Африки. Соответственно в подобных лесах эти скорпионы чувствуют себя «в своей тарелке», хорошенько укрываясь от хищников под различными укрытиями, будто поваленное дерево, кусок коры или камень. Pandinus и Heterometrus способны вырывать подкопы, если не в состоянии втиснуться в ту или иную щель. Все скорпионы являются созданиями ночи, поэтому из укрытий выбираются лишь в ночное время, бродя по окрестностям, скорпионы охотятся на различных беспозвоночных и ищут партнеров для спаривания. В ночное время в укрытиях остаются лишь те, кто готовится к линьке, линяет или свежеперелинявшие особи или же самки, следящие за своим потомством.

Скорпионы являются одиночками и не встречаются в природе группами, поэтому при содержании в неволе, скорпионов следует держать поодиночке и ссаживать лишь для спаривания. Некоторые любители держат скорпионов группами, но как показывает опыт, лучше все же рассаживать каждую особь в отдельный садок. В противном случае, стычки за самок, корм и территорию не избежать. При чем зачастую, подобные стычки аканчиваются травмой или смертью одного из агрессоров.

 

(32 - количество проголосовавших)

Определение пола паука-птицееда

Одной из составляющих успешного разведения пауков-птицеедов является наиболее раннее определение пола пауков-птицеедов. Так, как самцы пауков созревают гораздо раньше самок, но к тому времени, когда созревают самки, уже утрачивают способность к размножению, в результате чего не получается синхронизации особей разного пола из одного кокона. Если дело касается популярных пауков, то это не проблема, всегда можно найти более молодого самца и подрастить, но есть и такие виды пауков-птицеедов, которые довольно редко встречаются в продаже и жалко будет упустить возможность получения от них потомства. Если научится определять половую принадлежность паучат на первых возрастах, и создавать в дальнейшем разнополым особям соответствующие условия для их развития, то может получиться так, что оба пола созреют в одно и то же время. Для того, чтобы получить подобную синхронизацию, самок следует кормить более обильно нежели самцов, при этом содержать на температуре, которая будет несколько выше. Данные условия не гарантируют, что самка созреет к тому времени, когда самец станет половозрелым, поскольку отмечены такие случаи, что даже при более благоприятных условиях для роста, самки не хотят линять, а самцы, хоть и содержаться в более «жестких» условиях, линяют «не по дням, а по часам».

Метод определения пола по экзювию

Самым точным методом определения пола у пауков-птицеедов считается метод, который опирается на исследования экзувия паука (освобожденного скелета). Благодаря этому методу можно определить пол пауков-птицеедов на первых возрастах.

Взрослые или подрощенные особи:

Для того, чтобы определить половую принадлежность данным методом, необходимо развернуть нижнюю часть брюшка экзувия паука. Область, на которую следует обратить внимание, находится между двумя белыми пятнами, располагающимися ближе к основанию брюшка. Эта и еще одна пара подобных пятен, определяют место стигмальной диспозиции легких паука-птицееда. В области между первой парой стигм пауков-птицеедов находятся половые органы. У самок в данной области находится след от сперматеки (семяприемника), у различных видов форма сперматеки птицеедов варьируется, но, не смотря на это, она хорошо выражена, и ее с легкостью можно заметить. У самцов же в данной области поверхность ровная.

Если экзувий высох – его можно размочить в спирте (водке) или же горячей воде.

Пауки первых возрастов:

Для того, чтобы определить половую принадлежность птицееда данным методом у пауков первых возрастов, Вам понадобится микроскоп или бинокуляр, хорошее освещение, несколько иголочек, салфетка, спирт или водка и какой- либо краситель – это может быть фуксин, но проще всего купить в аптеке флакончик обычного йода.

Экзувий лучше всего извлечь из объема паука сразу после линьки, при этом постарайтесь не потревожить только что полинявшую особь, так как в первые часы после линьки пауки довольно уязвимы. После того, как экзувий извлечен, следует отделить необходимую для нас часть, как упоминалось выше – это нижняя часть брюшка. Затем берем стеклышко от микроскопа, капаем на него каплю спирта (водки) и кладем на эту каплю, приготовленную ранее часть экзювия. Затем нам понадобятся иголки, с помощью которых необходимо постараться расправить хитин. Не стоит расстраиваться, если у Вас не получилось распрямить экзувий или Вы его случайно повредили, со временем Вы научитесь расправлять его. После того, как оболочка расправлена, нужно убрать излишки спирта с помощью салфетки, аккуратно пропитывая сначала бока вокруг экзювия, после чего сам экзювий. Затем, берем краситель и капаем капельку на используемую нами область (промежуток между нижней частью первой пары стигм), после чего необходимо еще раз воспользоваться салфеткой. Теперь можно посмотреть под микроскопом, если эта самка, то сперматека закрасится намного ярче остальной области и будет отчетливо видна.

Не стоит забывать, что при определении пола данным методом у пауков первых возрастов вам понадобится уйма терпения, поскольку процесс расправления экзювия может отнять немало времени. К тому же, зачастую, бывает так, что паук успел пожевать линочнуб оболочку, тем самым приведя ее в негодность. Кроме всего перечисленного вам может понадобиться каталог сперматек самок пауков-птицеедов, поскольку сперматеки разных видов могут сильно различаться по форме.

Использование водки или спирта обязательно, даже если линька свежая и ее не нужно размачивать, поскольку при использовании воды линька будет, как намагниченная, сворачиваться и переворачиваться на обратную сторону.

Без красителя сперматека будет сливаться с основным фоном, тем самым будет не заметна для глаз.

Убирать остатки влаги с помощью салфетки также необходимо, в противном случаи краситель будет растворяться в спирте, а не окрашивать непосредственно саму линьку.

По эпиандральным железам самцов

Данный метод, также считается довольно точным, поскольку базируется на научном подходе и единственный точный из всех методов определения паука по живому экземпляру. Кроме того, он не требует экзувия, который можно получить только после линьки паука. При рассмотрении паутинного аппарата пауков-птицеедов можно заметить, что только самцы имеют специальные паутинные железы в области эпигинума. Впереди от эпигастральной борозды находятся придатки этих желез, которые едва заметно открываются отверстиями. Данные отверстия имеют круглую или треугольную форму и располагаются в 2-4 ряда. Область расположения данных отверстий можно определить по густым коротким и более темным волоскам, которые в совокупности вырисовывают своеобразную арку. Данные придатки используются самцами при плетении сперматической сеточки, так что, если они обнаружены у паука, значит данная особь является самцом, если же их нет – значит это самка.

Данные придатки имеют некие сходства с основными паутинными ножками (spinneret) и называются epiandrous fusillae (эпиандральные железы).

Для того, чтобы точно определять половую принадлежность данным методом, следует иметь наметанный глаз и несколько разнополых экземпляров для сравнения, кроме того, необходимо научится аккуратно обращаться с пауками для того, чтобы паука можно было брать в руки и исследовать локальную область. Наиболее сложно определять пол данным методом у пауков имеющих светлую окраску нижней части брюшка и самих волосков, которые обозначают место расположения данных придатков. К одним из таких видов пауков относятся: Aphonopelma seemanni, Megaphobema robustum, Nhandu coloratovillosus, поэтому набираться опыта лучше на пауках, которые имеют темную окраску волосков, указывающих место расположение придатков.

«Комплексный» метод определения пола пауков-птицеедов

Данный метод определения половой принадлежности паука-птицееда появился позже 2-х выше приведенных, и считается не таким точным, но все же при сравнении группы пауков можно с достаточно большой вероятностью определить к какому полу относится та или иная особь паука. Наличие группы пауков является обязательной для определения этим методом, так как он основывается на сравнении разнополых особей между собой по ряду признаков:

  • По форме эпигастральной борозды.
  • По расстоянию между первой парой стигм (отверстий).
  • По углу наклона первой пары стигм.

Эпигастральная борозда самок имеет более выгнутую форму по сравнению с самцом, у самцов же эпигастральная борозда представляет собой практически прямую линию, проходящую между первой парой легких.

Расстояние между первой парой стигм: у самок легкие находятся на большем расстоянии друг от друга, у самцов легкие находятся ближе друг к другу.

Угол наклона первой пары стигм у самок имеет больший градус и составляет не менее 20гр., у самцов же легкие расположены более горизонтально, угол наклона, как правило, не превышает 5 градусов.

Для того чтобы было более понятно, обратите внимание на рисунок, который изображен ниже.

Белым цветом отмечена эпигастральная борозда.

Красным цветом отмечена линия, проведенная через середину легкого к линии, которая условно делит его на две части.

Двойной стрелкой указано расстояние между стигмами.

По размеру и форме хелицер

Еще один метод определения половой принадлежности птицееда по форме и размеру хелицер, это один из самых неточных методов, но, несмотря на это, его не стоит исключать, а можно использовать в совокупности с приведенными выше методами, для повышения процента точности. Хелицеры самок массивные, более широкие и мощные, имеют как бы бульбовидную форму, расширены у основания и немного сужены на конце. Хелицеры самца в свою очередь более тонкие и не такие широкие, кроме того, они более равномерные по всей длине от основания до кончика. Подобная разница в размерах и форме хорошо заметна у взрослых особей, но, к великому сожалению, незначительна у подростков. Поэтому, чтобы данный метод хоть как-то помог при выборе особи нужного пола, необходимо иметь группу пауков, желательно одного и того же размера. Автор данного метода д-р Роберт Гейл Брине Третий, утверждает, что с помощью данного метода успешно определяет пол неполовозрелых особей родов Aphonopelma и Brachypelma. Можно предположить также, что данный метод применим и к паукам из других родов, поскольку хелицеры самцов взрослых особей всех видов имеют меньшие размеры.

Существуют и другие методы определения пола пауков-птицеедов, но все они совсем не значительны, поэтому они не будут здесь описываться, а лишь кратко перечисляться:

  • соотношение абдомена и головогруди (акрона);
  • соотношения пропорций длины ног по отношению к телу;
  • незначительные отличия в педипальпах;
  • темпы роста: самки, как правило, растут несколько медленнее самцов, поэтому можно сделать вывод, что большинство самых крупных особей – это самцы. При этом важно, чтобы все исследуемые особи содержались в одинаковых условиях и не имели каких либо патологий.

Практически все кратко перечисленные методы основываются на половом диморфизме пауков-птицеедов. Как известно большинство половозрелых пауков одного и того же вида могут иметь различную окраску, форму, размер и пропорции тела. Больше всего заметно соотношение длины ног по отношению к телу. Кроме того, у самцов после дефинитивной линьки появляются бульбусы и тибиальные шпоры. Из чего можно сделать вывод, что какие-то задатки данных изменений имеются и у подростков. Просто у отдельных видов данная разница заметна уже в более раннем возрасте, например у родов Poecilotheria, Ephebopus, разницу в соотношении ног и тела разных полов можно увидеть на более ранних этапах. А у пауков из других родов, эта разница может быть совсем не заметной. Например, если сравнивать Nhandu coloratovillosus, то сложно найти какие-то отличия у разнополых особей.

Таким образом, определение пола паука-птицееда является очень полезным навыком!

 

(14 - количество проголосовавших)

altВсего отряд Theraphosidae насчитывает 112 родов.

Возле каждого рода или вида написано кем и когда был открыт данный род или вид, а так же место обитания данного вида. Кроме того, нажав на некоторые виды, вы сможете посмотреть более подробную информацию.

Ни для кого не секрет, что пауков-птицеедов частенько переименовывают и переносят из одного рода в другой.

Так же периодически открывают новые виды. Поэтому для поддержания соответствия данной таблицы настоящим данным просим сообщать наc, о, услышанных Вами изменениях, а мы в свою очередь будем радовать Вас, свежей информацией.

Theraphosidae

Acanthopelma (Cambridge, 1897)
Acanthoscurria (Ausserer, 1871) 
Aenigmarachne (Schmidt, 2005) 
Annandaliella (Hirst, 1909)
Anoploscelus (Pocock, 1897) 
Aphonopelma (Pocock, 1901) 
Augacephalus (Gallon, 2002)
Avicularia (Lamarck, 1818) 
Batesiella (Pocock, 1903) 
Bonnetina (Vol, 2000)
Brachionopus (Pocock, 1897) 
Brachypelma (Simon, 1891)
Cardiopelma (Vol, 1999)
Catumiri (Guadanucci, 2004) 
Ceratogyrus (Pocock, 1897)
Chaetopelma (Ausserer, 1871) 
Chilobrachys (Karsch, 1891)
Chromatopelma (Schmidt, 1995) 
Citharacanthus (Pocock, 1901)
Citharischius (Pocock, 1900)
Citharognathus (Pocock, 1895) 
Clavopelma (Chamberlin, 1940) 
Coremiocnemis (Simon, 1892) 
Crassicrus (Reichling & West, 1996) 
Cratorrhagus (Simon, 1891)
Cyclosternum (Ausserer, 1871) 
Cyriocosmus (Simon, 1903)
Cyriopagopus (Simon, 1887) 
Cyrtopholis (Simon, 1892)
Encyocratella (Strand, 1907)
Encyocrates (Simon, 1892)
Ephebopus (Simon, 1892)
Euathlus (Ausserer, 1875)
Eucratoscelus (Pocock, 1898) 
Eumenophorus (Pocock, 1897) 
Eupalaestrus (Pocock, 1901) 
Euphrictus (Hirst, 1908)
Grammostola (Simon, 1892)
Hapalopus (Ausserer, 1875) 
Hapalotremus (Simon, 1903) 
Haploclastus (Simon, 1892) 
Haplocosmia (Schmidt & von Wirth, 1996) 
Haplopelma (Simon, 1892)
Harpactira (Ausserer, 1871) 
Harpactirella (Purcell, 1902) 
Hemiercus (Simon, 1903) 
Hemirrhagus (Simon, 1903) 
Heteroscodra (Pocock, 1899) 
Heterothele (Karsch, 1879) 
Holothele (Karsch, 1879)
Homoeomma (Ausserer, 1871) 
Hysterocrates (Simon, 1892) 
Idiothele (Hewitt, 1919)
Iridopelma (Pocock, 1901) 
Ischnocolus (Ausserer, 1871) 
Lampropelma (Simon, 1892) 
Lasiodora (C. L. Koch, 1850) 
Lasiodorides (Schmidt & Bischoff, 1997) 
Loxomphalia (Simon, 1889)
Loxoptygus (Simon, 1903)
Lyrognathus (Pocock, 1895)
Maraca (Pérez-Miles, 2006)
Mascaraneus (Gallon, 2005)
Megaphobema (Pocock, 1901)
Melloleitaoina (Gerschman & Schiapelli, 1960) 
Metriopelma (Becker, 1878)
Monocentropus (Pocock, 1897)
Myostola (Simon, 1903)
Neostenotarsus (Pribik & Weinmann, 2004)
Nesiergus (Simon, 1903)
Nesipelma (Schmidt & Kovarik, 1996) 
Nhandu (Lucas, 1983)
Oligoxystre (Vellard, 1924)
Ornithoctonus (Pocock, 1892)
Orphnaecus (Simon, 1892)
Ozopactus (Simon, 1889)
Pachistopelma (Pocock, 1901)
Pamphobeteus (Pocock, 1901)
Paraphysa (Simon, 1892) 
Phlogiellus (Pocock, 1897) 
Phoneyusa (Karsch, 1884) 
Phormictopus (Pocock, 1901)
Phormingochilus (Pocock, 1895) 
Plesiopelma (Pocock, 1901)
Plesiophrictus (Pocock, 1899) 
Poecilotheria (Simon, 1885) 
Proshapalopus (Mello-Leitao, 1923) 
Psalmopoeus (Pocock, 1895) 
Pseudhapalopus (Strand, 1907) 
Pterinochilus (Pocock, 1897) 
Reversopelma (Schmidt, 2001) 
Schismatothele (Karsch, 1879)
Schizopelma (Cambridge, 1897) 
Selenobrachys (Schmidt, 1999) 
Selenocosmia (Ausserer, 1871) 
Selenogyrus (Pocock, 1897) 
Selenotholus (Hogg, 1902) 
Selenotypus (Pocock, 1895) 
Sericopelma (Ausserer, 1875) 
Sickius (Soares & Camargo, 1948) 
Sphaerobothria (Karsch, 1879) 
Stichoplastoris (Rudloff, 1997) 
Stromatopelma (Karsch, 1881) 
Tapinauchenius (Ausserer, 1871) 
Theraphosa (Thorell, 1870) 
Thrigmopoeus (Pocock, 1899) 
Thrixopelma (Schmidt, 1994) 
Tmesiphantes (Simon, 1892) 
Trichognathella (Gallon, 2004) 
Vitalius (Lucas, Silva & Bertani, 1993) 
Xenesthis (Simon, 1891) 
Yamia (Kishida, 1920)

          По видам:

Acanthopelma

 Acanthopelma beccarii (Caporiacco, 1947) Guyana  
 Acanthopelma rufescens (Cambridge, 1897) Central America

Acanthoscurria

 Acanthoscurria acuminata (Schmidt & Tesmoingt, in Schmidt, 2005) Bolivia, Brazil  
 Acanthoscurria antillensis (Pocock, 1903) Lesser Antilles  
 Acanthoscurria atrox (Vellard, 1924) Brazil  
 Acanthoscurria aurita (Piza, 1939) Brazil  
 Acanthoscurria bollei (Schmidt, 2005) Argentina, Uruguay  
 Acanthoscurria borealis (Schmidt & Peters, in Schmidt, 2005) Guatemala  
 Acanthoscurria brocklehursti (Cambridge, 1896) Brazil  
 Acanthoscurria chacoana (Brèthes, 1909) Bolivia, Paraguay, Argentina  
 Acanthoscurria chiracantha (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria convexa (C. L. Koch, 1842) Brazil  
 Acanthoscurria cordubensis (Thorell, 1894) Brazil  
 Acanthoscurria cunhae (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria cursor (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Acanthoscurria ferina (Simon, 1892) Peru, Bolivia, Brazil  
 Acanthoscurria fracta (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Acanthoscurria geniculata (C. L. Koch, 1841) Brazil  
 Acanthoscurria gomesiana (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria guaxupe (Piza, 1972) Brazil  
 Acanthoscurria hirsutissimasterni (Schmidt, 2007) Argentina  
 Acanthoscurria insubtilis (Simon, 1892) Bolivia  
 Acanthoscurria juruenicola (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria maga (Simon, 1892) South America  
 Acanthoscurria melanotheria (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria minor (Ausserer, 1871) Guyana  
 Acanthoscurria musculosa (Simon, 1892) Bolivia, Brazil  
 Acanthoscurria natalensis (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Acanthoscurria parahybana (Mello-Leitao, 1926) Brazil  
 Acanthoscurria paulensis (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria pugnax (Vellard, 1924) Brazil  
 Acanthoscurria rhodothele (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria rondoniae (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria sternalis (Pocock, 1903) Bolivia, Paraguay, Argentina  
 Acanthoscurria suina (Pocock, 1903) Argentina, Uruguay  
 Acanthoscurria tarda (Pocock, 1903) Brazil  
 Acanthoscurria theraphosoides (Doleschall, in Ausserer, 1871) Brazil  
 Acanthoscurria transamazonica (Piza, 1972) Brazil  
 Acanthoscurria urens (Vellard, 1924) Brazil  
 Acanthoscurria violacea (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Acanthoscurria xinguensis (Timotheo, 1960) Brazil

Aenigmarachne

 Aenigmarachne sinapophysis (Schmidt, 2005) Costa Rica

Annandaliella

 Annandaliella pectinifera (Gravely, 1935) India  
 Annandaliella travancorica (Hirst, 1909) India

Anoploscelus

 Anoploscelus celeripes (Pocock, 1897) Uganda, Tanzania  
 Anoploscelus lesserti (Laurent, 1946) Rwanda

Aphonopelma

 Aphonopelma aberrans (Chamberlin, 1917) Chile  
 Aphonopelma anax (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma anitahoffmannae (Locht et al., 2005) Mexico  
 Aphonopelma apacheum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma armada (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma arnoldi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma baergi (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma behlei (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma bicoloratum (Struchen, Brändle & Schmidt, 1996) Mexico  
 Aphonopelma bistriatum (C. L. Koch, 1838) Brazil  
 Aphonopelma braunshausenii (Tesmoingt, 1996) Mexico  
 Aphonopelma breenei (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma brunnius (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma burica (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Aphonopelma caniceps (Simon, 1891) Mexico  
 Aphonopelma chalcodes Chamberlin, 1940) USA   
 Aphonopelma chamberlini (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma chambersi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma clarki (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma clarum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma coloradanum (Chamberlin, 1940) USA   
 Aphonopelma cookei (Smith, 1995) Mexico  
 Aphonopelma cratium (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma crinirufum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Aphonopelma crinitum (Pocock, 1901) Mexico  
 Aphonopelma cryptethum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma duplex (Chamberlin, 1925) Mexico  
 Aphonopelma echinum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma eustathes (Chamberlin, 1940) Mexico  
 Aphonopelma eutylenum (Chamberlin, 1940 USA  
 Aphonopelma gabeli (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma geotoma (Chamberlin, 1937) Mexico  
 Aphonopelma gertschi (Smith, 1995) Mexico  
 Aphonopelma griseum (Chamberlin, 1940) Mexico  
 Aphonopelma gurleyi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma hageni (Strand, 1906) Mexico  
 Aphonopelma harlingenum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma helluo (Simon, 1891) Mexico  
 Aphonopelma hentzi (Girard, 1852) USA  
 Aphonopelma hesperum (Chamberlin, 1917) Mexico  
 Aphonopelma heterops (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma hollyi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma iodius (Chamberlin & Ivie, 1939) USA  
 Aphonopelma iviei (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma joshua (Prentice, 1997) USA  
 Aphonopelma jungi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma lanceolatum (Simon, 1891) Nicaragua  
 Aphonopelma latens (Chamberlin, 1917) El Salvador, Nicaragua  
 Aphonopelma levii (Smith, 1995) Mexico  
 Aphonopelma lithodomum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma marxi (Simon, 1891) USA  
 Aphonopelma minchi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma moderatum (Chamberlin & Ivie, 1939) USA  
 Aphonopelma mojave (Prentice, 1997) USA  
 Aphonopelma mooreae (Smith, 1995) Mexico  
 Aphonopelma mordax (Ausserer, 1871) USA  
 Aphonopelma nayaritum (Chamberlin, 1940) Mexico  
 Aphonopelma odelli (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma pallidum (Cambridge, 1897) Mexico  
 Aphonopelma paloma (Prentice, 1993) USA  
 Aphonopelma pedatum (Strand, 1907) Surinam  
 Aphonopelma phanum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma phasmus (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma platnicki (Smith, 1995 Mexico  
 Aphonopelma prosoicum (Chamberlin, 1940) Mexico  
 Aphonopelma punzoi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma radinum (Chamberlin & Ivie, 1939) USA  
 Aphonopelma reversum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma rothi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma rubropilosum (Ausserer, 1871) Brazil  
 Aphonopelma ruedanum (Chamberlin, 1940) Mexico  
 Aphonopelma rusticum (Simon, 1891) Mexico  
 Aphonopelma sandersoni (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma schmidti (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma sclerothrix (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Aphonopelma seemanni (Cambridge, 1897) Central America  
 Aphonopelma serratum (Simon, 1891) Mexico  
 Aphonopelma smithi (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma stahnkei (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma steindachneri (Ausserer, 1875) USA  
 Aphonopelma stoicum (Chamberlin, 1925) USA  
 Aphonopelma sullivani (Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma texense (Simon, 1891) USA  
 Aphonopelma truncatum (Cambridge, 1897) Mexico  
 Aphonopelma vogelae Smith, 1995) USA  
 Aphonopelma vorhiesi (Chamberlin & Ivie, 1939) USA  
 Aphonopelma waconum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma wichitanum (Chamberlin, 1940) USA  
 Aphonopelma xanthochromum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Aphonopelma zionis (Chamberlin, 1940) USA  
 

Augacephalus

 Augacephalus breyeri (Hewitt, 1919) South America, Mozambique, Swaziland  
 Augacephalus junodi (Simon, 1904) East and South America

Avicularia

 Avicularia affinis (Nicolet, 1849) Chile  
 Avicularia alticeps (Keyserling, 1878) Uruguay  
 Avicularia ancylochira Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Avicularia anthracina (C. L. Koch, 1842) Uruguay  
 Avicularia aurantiaca (Bauer, 1996) Peru  
 Avicularia avicularia (Linnaeus, 1758) Costa Rica to Brazil   
 Avicularia avicularia variegata (Cambridge, 1896) Brazil  
 Avicularia aymara (Chamberlin, 1916) Peru  
 Avicularia azuraklaasi (Tesmoingt, 1996) Peru  
 Avicularia bicegoi (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Avicularia borelli (Simon, 1897) Paraguay  
 Avicularia braunshauseni (Tesmoingt, 1999) Brazil  
 Avicularia caesia (C. L. Koch, 1842) Puerto Rico  
 Avicularia cuminami (Mello-Leitao, 1930) Brazil  
 Avicularia detrita (C. L. Koch, 1842) Brazil  
 Avicularia diversipes (C. L. Koch, 1842) Brazil  
 Avicularia doleschalli (Ausserer, 1871) Brazil  
 Avicularia exilis (Strand, 1907) Surinam  
 Avicularia fasciculata (Strand, 1907) South America  
 Avicularia fasciculata clara (Strand, 1907) South America  
 Avicularia geroldi (Tesmoingt, 1999) Brazil  
 Avicularia glauca (Simon, 1891) Panama  
 Avicularia gracilis (Keyserling, 1891) Brazil  
 Avicularia guyana (Simon, 1892) Guyana  
 Avicularia hirschii (Bullmer, Thierer-Lutz & Schmidt, 2006)   
 Avicularia hirsuta (Ausserer, 1875) Cuba  
 Avicularia holmbergi (Thorell, 1890) French Guiana  
 Avicularia huriana (Tesmoingt, 1996) Ecuador  
 Avicularia juruensis (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Avicularia laeta (C. L. Koch, 1842) Puerto Rico  
 Avicularia leporina (C. L. Koch, 1841) Brazil  
 Avicularia metallica (Ausserer, 1875) Surinam  
 Avicularia minatrix (Pocock, 1903) Venezuela  
 Avicularia nigrotaeniata (Mello-Leitao, 1940) Guyana  
 Avicularia obscura (Ausserer, 1875) Colombia  
 Avicularia ochracea (Perty, 1833) Brazil  
 Avicularia palmicola (Mello-Leitao, 1945) Brazil  
 Avicularia panamensis (Simon, 1891) Mexico, Guatemala  
 Avicularia parva (Keyserling, 1878) Uruguay   
 Avicularia plantaris (C. L. Koch, 1842) Brazil  
 Avicularia pulchra (Mello-Leitao, 1933) Brazil  
 Avicularia purpurea (Kirk, 1990) Ecuador  
 Avicularia rapax (Ausserer, 1875) South America  
 Avicularia recifiensis (Struchen & Brändle, 1996) Brazil  
 Avicularia rufa (Schiapelli & Gerschman, 1945) Brazil  
 Avicularia rutilans (Ausserer, 1875) Colombia  
 Avicularia soratae (Strand, 1907) Bolivia  
 Avicularia subvulpina (Strand, 1906) South America  
 Avicularia surinamensis (Strand, 1907) Surinam  
 Avicularia taunayi (Mello-Leitao, 1920) Brazil  
 Avicularia tigrina (Pocock, 1903) Uruguay  
 Avicularia ulrichea (Tesmoingt, 1996) Brazil  
 Avicularia urticans (Schmidt, 1994) Peru  
 Avicularia velutina (Simon, 1889) Venezuela  
 Avicularia versicolor (Walckenaer, 1837) Guadeloupe, Martinique  
 Avicularia violacea (Mello-Leitao, 1930) Brazil  
 Avicularia walckenaeri (Perty, 1833) Brazil

Batesiella

 Batesiella crinita (Pocock, 1903) Cameroon

Bonnetina

 Bonnetina cyaneifemur (Vol, 2000) Mexico  
 Bonnetina rudloffi (Vol, 2001) Mexico

Brachionopus

 Brachionopus annulatus (Purcell, 1903) South Africa  
 Brachionopus leptopelmiformis (Strand, 1907) South Africa  
 Brachionopus pretoriae (Purcell, 1904) South Africa  
 Brachionopus robustus (Pocock, 1897) South Africa  
 Brachionopus tristis (Purcell, 1903) South Africa

Brachypelma

 Brachypelma albiceps (Pocock, 1903) Mexico  
 Brachypelma albopilosum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Brachypelma andrewi (Schmidt, 1992) may be in Mexico  
 Brachypelma angustum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Brachypelma annitha (Tesmoingt, Cleton & Verdez, 1997) Mexico  
 Brachypelma auratum (Schmidt, 1992) Mexico  
 Brachypelma aureoceps (Chamberlin, 1917) USA  
 Brachypelma baumgarteni (Smith, 1993) Mexico  
 Brachypelma boehmei (Schmidt & Klaas, 1993) Mexico  
 Brachypelma embrithes (Chamberlin & Ivie, 1936) Panama  
 Brachypelma emilia (White, 1856) Mexico  
 Brachypelma epicureanum (Chamberlin, 1925) Mexico  
 Brachypelma fossorium (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Brachypelma hamorii (Tesmoingt, Cleton & Verdez, 1997) Mexico  
 Brachypelma klaasi (Schmidt & Krause, 1994) Mexico  
 Brachypelma sabulosum (Cambridge, 1897) Guatemala  
 Brachypelma schroederi (Rudloff, 2003) Mexico  
 Brachypelma smithi (Cambridge, 1897) Mexico  
 Brachypelma vagans (Ausserer, 1875) Mexico, Central America  
 Brachypelma verdezi (Schmidt, 2003) Mexico

Cardiopelma

 Cardiopelma mascatum (Vol, 1999) Unknown

Catumiri

 Catumiri argentinense (Mello-Leitao, 1941) Chili, Argentina  
 Catumiri chicaoi (Guadanucci, 2004) Brazil  
 Catumiri petropolium (Guadanucci, 2004) Brazil  
 Catumiri uruguayense (Guadanucci, 2004) Brazil, Uruguay

Ceratogyrus

 Ceratogyrus bechuanicus (Purcell, 1902) Southern Africa  
 Ceratogyrus brachycephalus (Hewitt, 1919) Botswana, Zimbabwe  
 Ceratogyrus darlingi (Pocock, 1897) Zimbabwe, Mozambique  
 Ceratogyrus dolichocephalus (Hewitt, 1919) Zimbabwe  
 Ceratogyrus ezendami (Gallon, 2001) Mozambique  
 Ceratogyrus hillyardi (Smith, 1990) Malawi  
 Ceratogyrus marshalli (Pocock, 1897) Zimbabwe, Mozambique  
 Ceratogyrus meridionalis (Hirst, 1907) Malawi, Mozambique  
 Ceratogyrus paulseni (Gallon, 2005) Southern Africa  
 Ceratogyrus pillansi (Purcell, 1902) Zimbabwe, Mozambique  
 Ceratogyrus sanderi (Strand, 1906) Namibia, Zimbabwe

Chaetopelma

 Chaetopelma adenense (Simon, 1890) Syria, Aden  
 Chaetopelma arabicum (Strand, 1908) Middle East  
 Chaetopelma gardineri (Hirst, 1911) Seychelles  
 Chaetopelma gracile (Ausserer, 1871) Cyprus  
 Chaetopelma karlamani (Vollmer, 1997) Cyprus  
 Chaetopelma olivaceum (C. L. Koch, 1841) Syria to East Africa  
 Chaetopelma shabati (Hassan, 1950) Egypt  
 Chaetopelma webborum (Smith, 1990 Cameroon

Chilobrachys

 Chilobrachys andersoni (Pocock, 1895) India, Myanmar, Malaysia  
 Chilobrachys annandalei (Simon, 1901) Malaysia  
 Chilobrachys assamensis (Hirst, 1909) India  
 Chilobrachys bicolor (Pocock, 1895) Myanmar  
 Chilobrachys brevipes (Thorell, 1897) Myanmar  
 Chilobrachys dyscolus (Simon, 1886) Vietnam  
 Chilobrachys femoralis (Pocock, 1900) India  
 Chilobrachys fimbriatus (Pocock, 1899) India  
 Chilobrachys flavopilosus (Simon, 1884) India, Myanmar  
 Chilobrachys fumosus (Pocock, 1895) India  
 Chilobrachys hardwicki (Pocock, 1895) India  
 Chilobrachys huahini (Schmidt & Huber, 1996) Thailand  
 Chilobrachys hubei (Song & Zhao, 1988) China  
 Chilobrachys jingzhao (Zhu, Song & Li, 2001) Unknown  
 Chilobrachys nitelinus (Karsch, 1891) Sri Lanka  
 Chilobrachys oculatus (Thorell, 1895) Myanmar  
 Chilobrachys paviei (Simon, 1886) Thailand  
 Chilobrachys pococki (Thorell, 1897) Myanmar  
 Chilobrachys sericeus (Thorell, 1895) Myanmar  
 Chilobrachys soricinus (Thorell, 1887) Myanmar  
 Chilobrachys stridulans (Wood-Mason, 1877) India  
 Chilobrachys thorelli (Pocock, 1900) India  
 Chilobrachys tschankoensis (Schenkel, 1963) China

Chromatopelma

 Chromatopelma cyaneopubescens (Strand, 1907) Venezuela

Citharacanthus

 Citharacanthus alayoni (Rudloff, 1995 Cuba  
 Citharacanthus cyaneus (Rudloff, 1994) Cuba  
 Citharacanthus livingstoni (Schmidt & Weinmann, 1996) Guatemala  
 Citharacanthus longipes (Cambridge, 1897) Mexico, Central America  
 Citharacanthus meermani (Reichling & West, 2000) Belize  
 Citharacanthus niger (Franganillo, 1931) Cuba  
 Citharacanthus sargi (Strand, 1907) Guatemala  
 Citharacanthus spinicrus (Latreille, 1819) Cuba, Hispaniola

Citharischius

 Citharischius crawshayi (Pocock, 1900) Kenya  
 Citharischius stridulantissimus (Strand, 1907) Africa

Citharognathus

 Citharognathus hosei (Pocock, 1895) Borneo  
 Citharognathus tongmianensis (Zhu, Li & Song, 2002) Unknown

Clavopelma

 Clavopelma tamaulipeca (Chamberlin, 1937) Mexico

Coremiocnemis

 Coremiocnemis cunicularia (Simon, 1892) Malaysia  
 Coremiocnemis tropix (Raven, 2005) Queensland  
 Coremiocnemis valida (Pocock, 1895) Malaysia

Crassicrus

 Crassicrus lamanai (Reichling & West, 1996) Belize

Cratorrhagus

 Cratorrhagus concolor (Simon, 1873) Syria  
 Cratorrhagus tetramerus (Simon, 1873) Syria

Cyclosternum

 Cyclosternum bicolor (Schiapelli & Gerschman, 1945) Brazil  
 Cyclosternum fasciatum (O. P.-Cambridge, 1892) Costa Rica   
 Cyclosternum garbei (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Cyclosternum gaujoni (Simon, 1889) Ecuador  
 Cyclosternum janeirum (Keyserling, 1891) Brazil  
 Cyclosternum janthinum (Simon, 1889) Ecuador  
 Cyclosternum kochi (Ausserer, 1871) Venezuela  
 Cyclosternum macropus (Ausserer, 1875) Mexico  
 Cyclosternum melloleitaoi Bücherl, Timotheo & Lucas, 1971) Brazil  
 Cyclosternum obesum (Simon, 1892) Brazil  
 Cyclosternum obscurum (Simon, 1891) Mexico  
 Cyclosternum palomeranum (West, 2000) Mexico  
 Cyclosternum pentalore (Simon, 1888) Guatemala  
 Cyclosternum rufohirtum (Simon, 1889) Venezuela  
 Cyclosternum schmardae (Ausserer, 1871) Colombia, Ecuador  
 Cyclosternum spinopalpus (Schaefer, 1996) Paraguay  
 Cyclosternum symmetricum (Bücherl, 1949) Brazil  
 Cyclosternum viridimonte (Valerio, 1982) Costa Rica

Cyriocosmus

 Cyriocosmus bertae (Pérez-Miles, 1998) Brazil  
 Cyriocosmus blenginii (Pérez-Miles, 1998) Bolivia   
 Cyriocosmus chicoi (Pérez-Miles, 1998) Brazil  
 Cyriocosmus elegans (Simon, 1889) Venezuela, Trinidad, Tobago  
 Cyriocosmus fasciatus (Mello-Leitao, 1930) Brazil  
 Cyriocosmus fernandoi (Fukushima, Bertani & da Silva, 2005) Brazil  
 Cyriocosmus leetzi (Vol, 1999) Colombia  
 Cyriocosmus nogueiranetoi (Fukushima, Bertani & da Silva, 2005) Brazil  
 Cyriocosmus ritae (Pérez-Miles, 1998) Peru, Brazil  
 Cyriocosmus sellatus ((Simon, 1889) Peru, Brazil  
 Cyriocosmus versicolor (Simon, 1897) Brazil, Paraguay

Cyriopagopus

 Cyriopagopus dromeus (Chamberlin, 1917) Philippines  
 Cyriopagopus paganus (Simon, 1887) Myanmar  
 Cyriopagopus schioedtei (Thorell, 1891) Malaysia  
 Cyriopagopus thorelli (Simon, 1901) Malaysia

Cyrtopholis

 Cyrtopholis agilis (Pocock, 1903) Hispaniola  
 Cyrtopholis anacanta (Franganillo, 1935) Cuba  
 Cyrtopholis annectans (Chamberlin, 1917) Barbados  
 Cyrtopholis bartholomaei (Latreille, 1832) St. Thomas, Antigua  
 Cyrtopholis bonhotei (Cambridge, 1901) Bahama Is.  
 Cyrtopholis bryantae (Rudloff, 1995) Cuba  
 Cyrtopholis culebrae (Petrunkevitch, 1929) Puerto Rico  
 Cyrtopholis cursor (Ausserer, 1875) Hispaniola  
 Cyrtopholis femoralis (Pocock, 1903) Montserrat  
 Cyrtopholis flavostriata (Schmidt, 1995) Virgin Is.  
 Cyrtopholis gibbosa (Franganillo, 1936) Cuba  
 Cyrtopholis innocua (Ausserer, 1871) Cuba  
 Cyrtopholis intermedia (Ausserer, 1875) South America  
 Cyrtopholis ischnoculiformis (Franganillo, 1926) Cuba  
 Cyrtopholis jamaicola (Strand, 1908) Jamaica  
 Cyrtopholis major (Franganillo, 1926) Cuba  
 Cyrtopholis media (Chamberlin, 1917) St. Kitts  
 Cyrtopholis meridionalis (Keyserling, 1891) Brazil  
 Cyrtopholis obsoleta (Franganillo, 1935) Cuba  
 Cyrtopholis palmarum (Schiapelli & Gerschman, 1945) Brazil  
 Cyrtopholis plumosa (Franganillo, 1931) Cuba  
 Cyrtopholis portoricae (Chamberlin, 1917) Puerto Rico  
 Cyrtopholis ramsi (Rudloff, 1995) Cuba  
 Cyrtopholis regibbosa (Rudloff, 1994) Cuba  
 Cyrtopholis respina (Franganillo, 1935) Cuba  
 Cyrtopholis schmidti (Rudloff, 1996) Brazil  
 Cyrtopholis unispina (Franganillo, 1926) Cuba  
 Cyrtopholis zorodes (Mello-Leitao, 1923) Brazil

Encyocratella

 Encyocratella olivacea (Strand, 1907) Madagascar

Encyocrates

 Encyocrates raffrayi (Simon, 1892) Madagascar

Ephebopus

 Ephebopus cyanognathus (West & Marshall, 2000) French Guiana  
 Ephebopus fossor (Pocock, 1903) Ecuador  
 Ephebopus murinus (Walckenaer, 1837) Brazil  
 Ephebopus rufescens (West & Marshall, 2000) French Guiana  
 Ephebopus uatuman (Lucas, Silva & Bertani, 1992) Brazil

Euathlus

 Euathlus latithorax (Strand, 1908) Ghana, probably South America  
 Euathlus pulcherrimaklaasi (Schmidt, 1991) Ecuador  
 Euathlus truculentus (Ausserer, 1875) Chile, Argentina  
 Euathlus vulpinus (Karsch, 1880) Chile

Eucratoscelus

 Eucratoscelus constrictus (Gerstäcker, 1873) Kenya, Tanzania  
 Eucratoscelus pachypus (Schmidt & von Wirth, 1990) Tanzania  
 Euathlus vulpinus ater (Donoso, 1957) Unknown

Eumenophorus

 Eumenophorus clementsi (Pocock, 1897) Sierra Leone  
 Eumenophorus murphyorum (Smith, 1990) Sierra Leone

Eupalaestrus

 Eupalaestrus campestratus (Simon, 1891) Brazil, Paraguay, Argentina  
 Eupalaestrus spinosissimus (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Eupalaestrus weijenberghi (Thorell, 1894) Brazil, Paraguay, Argentina

Euphrictus

 Euphrictus spinosus (Hirst, 1908) Cameroon  
 Euphrictus squamosus (Benoit, 1965) Congo

Grammostola

 Grammostola actaeon (Pocock, 1903) Brazil, Uruguay  
 Grammostola alticeps (Pocock, 1903) Uruguay  
 Grammostola aureostriata (Schmidt & Bullmer, 2001) Paraguay, Argentina  
 Grammostola burzaquensis (Ibarra, 1946) Argentina  
 Grammostola chalcothrix (Chamberlin, 1917) Argentina  
 Grammostola doeringi (Holmberg, 1881) Argentina  
 Grammostola fossor (Schmidt, 2001) Argentina  
 Grammostola gossei (Pocock, 1899) Argentina  
 Grammostola grossa (Ausserer, 1871) Brazil, Paraguay, Uruguay  
 Grammostola iheringi (Keyserling, 1891) Brazil  
 Grammostola inermis (Mello-Leitao, 1941) Argentina  
 Grammostola mendozae (Strand, 1907) Argentina  
 Grammostola mollicoma (Ausserer, 1875) Brazil, Uruguay, Paraguay  
 Grammostola monticola (Strand, 1907) Bolivia  
 Grammostola porteri (Mello-Leitao, 1936) Chile  
 Grammostola pulchra (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Grammostola rosea (Walckenaer, 1837) Bolivia, Chile, Argentina  
 Grammostola schulzei (Schmidt, 1994) Argentina  
 Grammostola vachoni (Schiapelli & Gerschman, 1961) Argentina

Hapalopus

 Hapalopus aldanus (West, 2000) Mexico  
 Hapalopus butantan (Pérez-Miles, 1998) Brazil  
 Hapalopus formosus (Ausserer, 1875) Colombia  
 Hapalopus guianensis (Caporiacco, 1954) French Guiana  
 Hapalopus nigriventris (Mello-Leitao, 1939) Venezuela  
 Hapalopus nondescriptus (Mello-Leitao, 1926) Brazil  
 Hapalopus tripepii (Dresco, 1984) Brazil  
 Hapalopus triseriatus (Caporiacco, 1955) Venezuela

Hapalotremus

 Hapalotremus albipes (Simon, 1903) Bolivia  
 Hapalotremus cyclothorax (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Hapalotremus exilis (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Hapalotremus major (Chamberlin, 1916) Peru  
 Hapalotremus muticus (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Hapalotremus scintillans (Mello-Leitao, 1929) Brazil

Haploclastus

 Haploclastus cervinus (Simon, 1892) India  
 Haploclastus himalayensis (Tikader, 1977) India  
 Haploclastus kayi (Gravely, 1915) India  
 Haploclastus nilgirinus (Pocock, 1899) India  
 Haploclastus robustus (Pocock, 1899) India  
 Haploclastus satyanus (Barman, 1978) India  
 Haploclastus tenebrosus (Gravely, 193)5 India  
 Haploclastus validus (Pocock, 1899) India

Haplocosmia

 Haplocosmia himalayana (Pocock, 1899) Himalayas  
 Haplocosmia nepalensis (Schmidt & von Wirth, 1996) Nepal

Haplopelma

 Haplopelma albostriatum (Simon, 1886) Myanmar, Thailand  
 Haplopelma doriae (Thorell, 1890) Borneo  
 Haplopelma hainanum (Liang et al., 1999) China  
 Haplopelma huwenum (Wang, Peng & Xie, 1993) Unknown  
 Haplopelma lividum (Smith, 1996) Myanmar, Thailand, Laos, Cambodia, Vietnam  
 Haplopelma longipes (von Wirth & Striffler, 2005) Thailand, Cambodia  
 Haplopelma minax (Thorell, 1897) Myanmar, Thailand  
 Haplopelma robustum (Strand, 1907) Singapore  
 Haplopelma salangense (Strand, 1907) Malaysia  
 Haplopelma schmidti (von Wirth, 1991) Vietnam  
 Haplopelma vonwirthi (Schmidt, 2005) Southeast Asia

Harpactira

 Harpactira atra (Latreille, 1832) South Africa  
 Harpactira baviana (Purcell, 1903) South Africa  
 Harpactira cafreriana (Walckenaer, 1837) South Africa  
 Harpactira chrysogaster (Pocock, 1897) South Africa  
 Harpactira curator (Pocock, 1898) South Africa  
 Harpactira curvipes (Pocock, 1897) South Africa  
 Harpactira dictator (Purcell, 1902) South Africa  
 Harpactira gigas (Pocock, 1898) South Africa  
 Harpactira guttata (Strand, 1907) South Africa  
 Harpactira hamiltoni (Pocock, 1902) South Africa  
 Harpactira lineata (Pocock, 1897) South Africa  
 Harpactira lyrata (Simon, 1892) South Africa  
 Harpactira marksi (Purcell, 1902) South Africa  
 Harpactira namaquensis (Purcell, 1902) Namibia, South Africa  
 Harpactira pulchripes (Pocock, 1901) South Africa  
 Harpactira tigrina (Ausserer, 1875) South Africa

Harpactirella

 Harpactirella domicola (Purcell, 1903) South Africa  
 Harpactirella flavipilosa (Lawrence, 1936) South Africa  
 Harpactirella helenae (Purcell, 1903) South Africa  
 Harpactirella insidiosa (Denis, 1960) Morocco  
 Harpactirella karrooica Purcell, 1902) South Africa  
 Harpactirella lapidaria (Purcell, 1908) South Africa  
 Harpactirella lightfooti (Purcell, 1902) South Africa   
 Harpactirella longipes (Purcell, 1902) South Africa  
 Harpactirella magna (Purcell, 1903) South Africa  
 Harpactirella schwarzi (Purcell, 1904) South Africa  
 Harpactirella spinosa (Purcell, 1908) South Africa  
 Harpactirella treleaveni (Purcell, 1902) South Africa

Hemiercus

 Hemiercus cervinus (Simon, 1889) Venezuela  
 Hemiercus inflatus (Simon, 1889) Venezuela  
 Hemiercus kastoni (Caporiacco, 1955) Venezuela  
 Hemiercus modestus (Simon, 1889) Colombia  
 Hemiercus proximus (Mello-Leitao, 1923) Brazil

Hemirrhagus

 Hemirrhagus cervinus (Simon, 1891) Mexico  
 Hemirrhagus chilango (Pérez-Miles & Locht, 2003) Mexico  
 Hemirrhagus coztic (Pérez-Miles & Locht, 2003) Mexico  
 Hemirrhagus elliotti (Gertsch, 1973) Mexico  
 Hemirrhagus eros (Pérez-Miles & Locht, 2003) Mexico  
 Hemirrhagus gertschi (Pérez-Miles & Locht, 2003) Mexico  
 Hemirrhagus grieta (Gertsch, 1982) Mexico  
 Hemirrhagus mitchelli (Gertsch, 1982) Mexico  
 Hemirrhagus nahuanus (Gertsch, 1982) Mexico  
 Hemirrhagus ocellatus (Pérez-Miles & Locht, 2003) Mexico  
 Hemirrhagus papalotl (Pérez-Miles & Locht, 2003) Mexico  
 Hemirrhagus pernix (Ausserer, 1875) Mexico  
 Hemirrhagus puebla (Gertsch, 1982) Mexico  
 Hemirrhagus reddelli (Gertsch, 1973) Mexico  
 Hemirrhagus stygius (Gertsch, 1971) Mexico

Heteroscodra

 Heteroscodra crassipes (Hirst, 1907) Cameroon, Gabon  
 Heteroscodra crassipes latithorax (Strand, 1920) Congo  
 Heteroscodra maculata (Pocock, 1899) West, Central Africa  
 Heteroscodra pachypoda (Strand, 1908) Cameroon

Heterothele

 Heterothele affinis (Laurent, 1946) Congo, Tanzania  
 Heterothele atropha (Simon, 1907) Congo  
 Heterothele caudicula (Simon, 1886) Argentina  
 Heterothele darcheni (Benoit, 1966) Gabon  
 Heterothele decemnotata (Simon, 1891) Congo  
 Heterothele gabonensis (Lucas, 1858) Gabon  
 Heterothele honesta (Karsch, 1879) Congo  
 Heterothele hullwilliamsi (Smith, 1990) Cameroon  
 Heterothele ogbunikia (Smith, 1990) Nigeria  
 Heterothele spinipes (Pocock, 1897) Tanzania  
 Heterothele villosella (Strand, 1907) East Africa

Holothele

 Holothele colonica (Simon, 1889) Venezuela  
 Holothele culebrae (Petrunkevitch, 1929) Puerto Rico  
 Holothele denticulata (Franganillo, 1930) Cuba  
 Holothele incei (Cambridge, 1898) Trinidad, Venezuela  
 Holothele longipes (L. Koch, in Ausserer, 1875) Venezuela  
 Holothele ludwigi (Strand, 1907) Venezuela  
 Holothele recta (Karsch, 1879) Venezuela  
 Holothele rondoni (Lucas & Bücherl, 1972) Brazil  
 Holothele sanguiniceps (Cambridge, 1898) Trinidad  
 Holothele sericea (Simon, 1903) Hispaniola  
 Holothele shoemakeri (Petrunkevitch, 1926) Costa Rica  
 Holothele steini (Simon, 1889) Venezuela  
 Holothele sulfurensis (Maréchal, 2005) Guadeloupe  
 Holothele vellardi (Rudloff, 1997) Venezuela  
 Holothele waikoshiemi (Bertani & Araújo, 2006) Venezuela

Homoeomma

 Homoeomma brasilianum (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Homoeomma elegans (Gerschman & Schiapelli, 1958) Argentina  
 Homoeomma familiare (Bertkau, 1880) Brazil  
 Homoeomma hirsutum (Mello-Leitao, 1935) Brazil  
 Homoeomma humile (Vellard, 1924) Brazil  
 Homoeomma montanum (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Homoeomma nigrum (Walckenaer, 1837) Brazil  
 Homoeomma peruvianum (Chamberlin, 1916) Peru  
 Homoeomma pictum (Pocock, 1903) Peru  
 Homoeomma simoni (Soares & Camargo, 1948) Brazil  
 Homoeomma strabo (Simon, 1892) Colombia, Brazil  
 Homoeomma stradlingi (O. P.-Cambridge, 1881) Brazil  
 Homoeomma uruguayense (Mello-Leitao, 1946) Uruguay, Argentina  
 Homoeomma villosum (Keyserling, 1891) Brazil

Hysterocrates

 Hysterocrates affinis (Strand, 1907) Cameroon  
 Hysterocrates affinis angusticeps (Strand, 1907) Cameroon  
 Hysterocrates apostolicus (Pocock, 1900) São Tomé  
 Hysterocrates crassipes (Pocock, 1897) Cameroon  
 Hysterocrates didymus (Pocock, 1900) São Tomé  
 Hysterocrates ederi (Charpentier, 1995) Bioko Is. (Equatorial Guinea)  
 Hysterocrates gigas (Pocock, 1897) Cameroon  
 Hysterocrates greeffi (Karsch, 1884) Cameroon  
 Hysterocrates greshoffi (Simon, 1891) Congo  
 Hysterocrates haasi (Strand, 1906) Cameroon  
 Hysterocrates hercules (Pocock, 1899) Niger, Nigeria  
 Hysterocrates laticeps (Pocock, 1897) Cameroon  
 Hysterocrates maximus (Strand, 1906) Cameroon  
 Hysterocrates ochraceus (Strand, 1907) Cameroon, Congo  
 Hysterocrates robustus (Pocock, 1899) Río Muni  
 Hysterocrates robustus sulcifer (Strand, 1908) Cameroon  
 Hysterocrates scepticus (Pocock, 1900) São Tomé  
 Hysterocrates sjostedti (Thorell, 1899) Cameroon  
 Hysterocrates spellenbergi (Strand, 1906) Cameroon  
 Hysterocrates vosseleri (Strand, 1906) West Africa  
 Hysterocrates weileri (Strand, 1906) Cameroon

Idiothele

 Idiothele nigrofulva (Pocock, 1898) Southern Africa

Iridopelma

 Iridopelma hirsutum (Pocock, 1901) Brazil  
 Iridopelma seladonium (C. L. Koch, 1841) Brazil  
 Iridopelma zorodes (Mello-Leitao, 1926) Brazil

Ischnocolus

 Ischnocolus algericus (Thorell, 1875) Algeria, Tunisia  
 Ischnocolus andalusiacus (Simon, 1873) Spain  
 Ischnocolus decoratus (Tikader, 1977) India  
 Ischnocolus fasciculatus (Strand, 1906) Ethiopia  
 Ischnocolus fuscostriatus (Simon, 1885) Algeria, Tunisia  
 Ischnocolus hancocki (Smith, 1990) Morocco  
 Ischnocolus holosericeus (L. Koch, in Ausserer, 1871) Spain  
 Ischnocolus jerusalemensis (Smith, 1990) Israel  
 Ischnocolus jickelii (L. Koch, 1875) Ethiopia  
 Ischnocolus khasiensis (Tikader, 1977) India  
 Ischnocolus maroccanus (Simon, 1873) Morocco, Algeria  
 Ischnocolus mogadorensis (Simon, 1909) Morocco  
 Ischnocolus numidus (Simon, 1909) Morocco, Algeria  
 Ischnocolus rubropilosus (Keyserling, 1891) Brazil  
 Ischnocolus syriacus (Ausserer, 1871) Syria  
 Ischnocolus tomentosus (Thorell, 1899) Cameroon, Congo  
 Ischnocolus triangulifer (Ausserer, 1871) Italy  
 Ischnocolus tripolitanus (Caporiacco, 1937) Libya  
 Ischnocolus tunetanus (Pavesi, 1880) Tunisia  
 Ischnocolus valentinus (Dufour, 1820) Spain

Lampropelma

 Lampropelma nigerrimum (Simon, 1892) Indonesia  
 Lampropelma violaceopes (Abraham, 1924) Malaysia, Singapore

Lasiodora

 Lasiodora acanthognatha (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora benedeni (Bertkau, 1880) Brazil  
 Lasiodora boliviana (Simon, 1892) Bolivia  
 Lasiodora brevibulba (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Lasiodora carinata (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Lasiodora citharacantha (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora cryptostigma (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora curtior (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Lasiodora differens (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Lasiodora difficilis (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora dolichosterna (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora dulcicola (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora erythrocythara (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora fallax (Bertkau, 1880) Brazil  
 Lasiodora fracta (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora gutzkei (Reichling, 1997) Belize  
 Lasiodora icecu (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Lasiodora isabellina (Ausserer, 1871) Brazil  
 Lasiodora itabunae (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora klugi (C. L. Koch, 1841) Brazil  
 Lasiodora lakoi (Mello-Leitao, 1943) Brazil  
 Lasiodora mariannae (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora moreni (Holmberg, 1876) Argentina  
 Lasiodora panamana (Petrunkevitch, 1925) Panama  
 Lasiodora pantherina (Keyserling, 1891) Brazil  
 Lasiodora parahybana (Mello-Leitao, 1917) Brazil  
 Lasiodora parvior (Chamberlin & Ivie, 1936) Panama  
 Lasiodora pleoplectra (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora puriscal (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Lasiodora rubitarsa (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Lasiodora saeva (Walckenaer, 1837) Uruguay  
 Lasiodora spinipes (Ausserer, 1871) Brazil  
 Lasiodora sternalis (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Lasiodora striatipes (Ausserer, 1871) Brazil  
 Lasiodora subcanens (Mello-Leitao, 1921) Brazil  
 Lasiodora tetrica (Simon, 1889) Venezuela  
 Lasiodora trinitatis (Pocock, 1903) Trinidad  
 Lasiodora trinitatis pauciaculeis (Strand, 1916) Trinidad

Lasiodorides

 Lasiodorides longicolli (Schmidt, 2003) Peru, Ecuador  
 Lasiodorides polycuspulatus (Schmidt & Bischoff, 1997) Peru  
 Lasiodorides rolinae (Tesmoingt, 1999) Peru  
 Lasiodorides striatus (Schmidt & Antonelli, 1996) Peru

Loxomphalia

 Loxomphalia rubida (Simon, 1889) Zanzibar

Loxoptygus

 Loxoptygus coturnatus (Simon, 1903) Ethiopia  
 Loxoptygus ectypus (Simon, 1889) Ethiopia  
 Loxoptygus erlangeri (Strand, 1906) Ethiopia

Lyrognathus

 Lyrognathus crotalus (Pocock, 1895) India  
 Lyrognathus pugnax (Pocock, 1900) India  
 Lyrognathus robustus (Smith, 1988) Malaysia  
 Lyrognathus saltator (Pocock, 1900) India

Maraca

 Maraca cabocla (Pérez-Miles, 2000) Brazil  
 Maraca horrida (Schmidt, 1994) Brazil, Venezuela

Mascaraneus

 Mascaraneus remotus (Gallon, 2005) Mauritius

Megaphobema

 Megaphobema mesomelas (O. P.-Cambridge, 1892) Costa Rica  
 Megaphobema peterklaasi (Schmidt, 1994) Costa Rica  
 Megaphobema robustum (Ausserer, 1875) Colombia  
 Megaphobema teceae (Pérez-Miles, Miglio & Bonaldo, 2006) Brazil  
 Megaphobema velvetosoma (Schmidt, 1995) Ecuador

Melloleitaoina

 Melloleitaoina crassifemur (Gerschman & Schiapelli, 1960) Argentina

Metriopelma

 Metriopelma breyeri (Becker, 1878) Mexico  
 Metriopelma coloratum (Valerio, 1982) Panama  
 Metriopelma drymusetes (Valerio, 1982) Costa Rica  
 Metriopelma familiare (Simon, 1889) Venezuela  
 Metriopelma ledezmae (Vol, 2001) Bolivia  
 Metriopelma spinulosum (Cambridge, 1897) Guatemala  
 Metriopelma variegata (Caporiacco, 1955) Venezuela  
 Metriopelma velox (Pocock, 1903) Ecuador  
 Metriopelma zebratum (Banks, 1909) Costa Rica  
 Monocentropus  
 Monocentropus balfouri (Pocock, 1897) Socotra  
 Monocentropus lambertoni (Fage, 1922) Madagascar  
 Monocentropus longimanus (Pocock, 1903) Yemen

Myostola

 Myostola occidentalis (Lucas, 1858) Gabon, Cameroon

Neostenotarsus

 Neostenotarsus scissistylus (Tesmoingt & Schmidt, 2002) French Guiana

Nesiergus

 Nesiergus halophilus (Benoit, 1978) Seychelles  
 Nesiergus insulanus (Simon, 1903) Seychelles  
 Nesipelma  
 Nesipelma insulare (Schmidt & Kovarik, 1996) Nevis

Nhandu

 Nhandu carapoensis (Lucas, 1983) Brazil, Paraguay  
 Nhandu cerradensis (Bertani, 2001) Brazil  
 Nhandu chromatus (Schmidt, 2004) Brazil  
 Nhandu coloratovillosus (Schmidt, 1998) Brazil  
 Nhandu vulpinus (Schmidt, 1998) Brazil

Oligoxystre

 Oligoxystre auratum (Vellard, 1924) Brazil  
 Oligoxystre bolivianum (Vol, 2001) Bolivia, Brazil  
 Oligoxystre caatinga (Guadanucci, 2007) Brazil  
 Oligoxystre dominguense (Guadanucci, 2007) Brazil  
 Oligoxystre rufoniger (Guadanucci, 2007) Brazil  
 Oligoxystre tucuruiense (Guadanucci, 2007) Brazil

Ornithoctonus

 Ornithoctonus andersoni (Pocock, 1892) Myanmar  
 Ornithoctonus aureotibialis (von Wirth & Striffler, 2005) Thailand, Malaysia  
 Ornithoctonus costalis (Schmidt, 1998) Thailand

Orphnaecus

 Orphnaecus pellitus (Simon, 1892) Philippines

Ozopactus

 Ozopactus ernsti (Simon, 1889) Venezuela

Pachistopelma

 Pachistopelma concolor (Caporiacco, 1947) Guyana  
 Pachistopelma rufonigrum (Pocock, 1901) Brazil

Pamphobeteus

 Pamphobeteus antinous (Pocock, 1903) Peru, Bolivia  
 Pamphobeteus augusti (Simon, 1889) Ecuador  
 Pamphobeteus ferox (Ausserer, 1875) Colombia  
 Pamphobeteus fortis (Ausserer, 1875) Colombia  
 Pamphobeteus insignis (Pocock, 1903) Colombia  
 Pamphobeteus nigricolor (Ausserer, 1875) Colombia to Bolivia  
 Pamphobeteus ornatus (Pocock, 1903) Colombia  
 Pamphobeteus petersi (Schmidt, 2002) Ecuador, Peru  
 Pamphobeteus ultramarinus (Schmidt, 1995) Ecuador  
 Pamphobeteus vespertinus (Simon, 1889) Ecuador

Paraphysa

 Paraphysa parvula (Pocock, 1903) Chile  
 Paraphysa scrofa (Molina, 1788) Chile, Argentina

Phlogiellus

 Phlogiellus aper (Simon, 1891) Java  
 Phlogiellus atriceps (Pocock, 1897) Java  
 Phlogiellus baeri (Simon, 1877) Philippines  
 Phlogiellus bicolor (Strand, 1911) New Britain  
 Phlogiellus brevipes (Thorell, 1897) Myanmar  
 Phlogiellus inermis (Ausserer, 1871) Malaysia to Lombok  
 Phlogiellus insularis (Simon, 1877) Philippines  
 Phlogiellus nebulosus (Rainbow, 1899) Solomon Is.  
 Phlogiellus ornatus (Thorell, 1897) Myanmar  
 Phlogiellus subarmatus (Thorell, 1891) Nicobar Is.  
 Phlogiellus subinermis (Giltay, 1934) Southeast Asia

Phoneyusa

 Phoneyusa antilope (Simon, 1889) Congo  
 Phoneyusa belandana (Karsch, 1884) Central African Rep.  
 Phoneyusa bettoni (Pocock, 1898) Kenya  
 Phoneyusa bidentata (Pocock, 1899) West, Central Africa  
 Phoneyusa bidentata ituriensis (Laurent, 1946) Congo  
 Phoneyusa bouvieri (Berland, 1917) Madagascar  
 Phoneyusa buettneri (Karsch, 1886) Gabon  
 Phoneyusa celerierae (Smith, 1990) Ivory Coast  
 Phoneyusa chevalieri (Simon, 1906) West Africa  
 Phoneyusa cultridens (Berland, 1917) Congo  
 Phoneyusa efuliensis (Smith, 1990) Cameroon  
 Phoneyusa elephantiasis (Berland, 1917) Congo  
 Phoneyusa gabonica (Simon, 1889) Gabon  
 Phoneyusa giltayi (Laurent, 1946) Congo  
 Phoneyusa gracilipes (Simon, 1889) Congo  
 Phoneyusa gregori (Pocock, 1897) Kenya  
 Phoneyusa lesserti (Dresco, 1973) Central African Rep.  
 Phoneyusa manicata (Simon, 1907) Principe  
 Phoneyusa minima (Strand, 1907) Cameroon  
 Phoneyusa mutica (Karsch, 1885) Tanzania, South Africa  
 Phoneyusa nigroventris (Marx, 1893) Congo  
 Phoneyusa principium (Simon, 1907) Principe  
 Phoneyusa rufa (Berland, 1914) East Africa  
 Phoneyusa rutilata (Simon, 1907) Guinea-Bissau  
 Phoneyusa westi (Smith, 1990) Angola

Phormictopus

 Phormictopus atrichomatus (Schmidt, 1991) Honduras  
 Phormictopus auratus (Ortiz & Bertani, 2005) Cuba  
 Phormictopus australis (Mello-Leitao, 1941) Argentina  
 Phormictopus brasiliensis (Strand, 1907) Brazil  
 Phormictopus cancerides (Latreille, 1806) West Indies to Brazil  
 Phormictopus cancerides centumfocensis (Franganillo, 1926) Cuba  
 Phormictopus cancerides tenuispinus (Strand, 1906) New World  
 Phormictopus cautus (Ausserer, 1875) South America  
 Phormictopus cubensis Chamberlin, 1917) Cuba  
 Phormictopus dubius (Chamberlin, 1917) Brazil  
 Phormictopus hirsutus (Strand, 1907) Venezuela  
 Phormictopus melodermus (Chamberlin, 1917) possibly West Indies  
 Phormictopus nesiotes (Chamberlin, 1917) Cuba  
 Phormictopus piephoi (Schmidt, 2003) Unknown  
 Phormictopus platus (Chamberlin, 1917) USA  
 Phormictopus ribeiroi (Mello-Leitao, 1923) Brazil

Phormingochilus

 Phormingochilus everetti (Pocock, 1895) Borneo  
 Phormingochilus fuchsi (Strand, 1906) Sumatra  
 Phormingochilus tigrinus (Pocock, 1895) Borneo

Plesiopelma

 Plesiopelma flavohirtum (Simon, 1889) Brazil  
 Plesiopelma gertschi (Caporiacco, 1955) Venezuela  
 Plesiopelma imperatrix (Piza, 1976) Brazil  
 Plesiopelma insulare (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Plesiopelma longisternale (Schiapelli & Gerschman, 1942) Argentina, Uruguay  
 Plesiopelma myodes (Pocock, 1901) Uruguay  
 Plesiopelma rectimanum (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Plesiopelma semiaurantiacum (Simon, 1897) Paraguay, Uruguay

Plesiophrictus

 Plesiophrictus bhori (Gravely, 1915) India  
 Plesiophrictus blatteri (Gravely, 1935) India  
 Plesiophrictus collinus (Pocock, 1899) India  
 Plesiophrictus fabrei (Simon, 1892) India  
 Plesiophrictus guangxiensis (Yin & Tan, 2000) China  
 Plesiophrictus linteatus (Simon, 1891) India  
 Plesiophrictus madraspatanus (Gravely, 1935) India  
 Plesiophrictus mahabaleshwari (Tikader, 1977) India  
 Plesiophrictus meghalayaensis (Tikader, 1977) India  
 Plesiophrictus millardi (Pocock, 1899) India  
 Plesiophrictus milleti (Pocock, 1900) India  
 Plesiophrictus raja (Gravely, 1915) India  
 Plesiophrictus satarensis (Gravely, 1915) India  
 Plesiophrictus senffti (Strand, 1907) Micronesia  
 Plesiophrictus sericeus (Pocock, 1900) India  
 Plesiophrictus tenuipes (Pocock, 1899) Sri Lanka

Poecilotheria

 Poecilotheria fasciata (Latreille, 1804) India, Sri Lanka  
 Poecilotheria formosa (Pocock, 1899) India  
 Poecilotheria hanumavilasumica (Smith, 2004) India  
 Poecilotheria metallica (Pocock, 1899) India  
 Poecilotheria miranda (Pocock, 1900) India  
 Poecilotheria nallamalaiensis (Rao et al., 2006) India  
 Poecilotheria ornata (Pocock, 1899) Sri Lanka  
 Poecilotheria pederseni (Kirk, 2001) Sri Lanka  
 Poecilotheria pococki (Charpentier, 1996) Sri Lanka  
 Poecilotheria regalis (Pocock, 1899) India  
 Poecilotheria rufilata (Pocock, 1899) India  
 Poecilotheria smithi (Kirk, 1996) Sri Lanka  
 Poecilotheria striata (Pocock, 1895) India  
 Poecilotheria subfusca (Pocock, 1895) Sri Lanka  
 Poecilotheria tigrinawesseli (Smith, 2006) India, Sri Lanka  
 Poecilotheria uniformis (Strand, 1913) Sri Lanka

Proshapalopus

 Proshapalopus amazonicus (Bertani, 2001) Brazil  
 Proshapalopus anomalus (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Proshapalopus multicuspidatus (Mello-Leitao, 1929) Brazil

Psalmopoeus

 Psalmopoeus affinis (Strand, 1907) West Indies  
 Psalmopoeus cambridgei (Pocock, 1895) Trinidad  
 Psalmopoeus ecclesiasticus (Pocock, 1903) Ecuador  
 Psalmopoeus emeraldus (Pocock, 1903) Colombia  
 Psalmopoeus intermedius (Chamberlin, 1940) Panama  
 Psalmopoeus irminia (Saager, 1994) Venezuela  
 Psalmopoeus langenbucheri (Schmidt, Bullmer & Thierer-Lutz, 2006)  
 Psalmopoeus maya (Witt, 1996) Belize  
 Psalmopoeus plantaris (Pocock, 1903) Colombia  
 Psalmopoeus pulcher (Petrunkevitch, 1925) Panama  
 Psalmopoeus reduncus (Karsch, 1880) Costa Rica  
 Psalmopoeus rufus (Petrunkevitch, 1925) Panama

Pseudhapalopus

 Pseudhapalopus aculeatus (Strand, 1907) Bolivia  
 Pseudhapalopus spinulopalpus (Schmidt & Weinmann, 1997) Colombia

Pterinochilus

 Pterinochilus alluaudi (Berland, 1914) East Africa  
 Pterinochilus chordatus (Gerstäcker, 1873) Ethiopia, Kenya, Somalia, Sudan, Tanzania, Uganda  
 Pterinochilus leetzi (Schmidt, 2002) Zambia  
 Pterinochilus lugardi (Pocock, 1900) South Africa  
 Pterinochilus murinus (Pocock, 1897) Kenya, Tanzania  
 Pterinochilus simoni (Berland, 1917) Congo  
 Pterinochilus vorax (Pocock, 1897) Tanzania

Reversopelma

 Reversopelma petersi (Schmidt, 2001) Ecuador or Peru

Schismatothele

 Schismatothele lineata (Karsch, 1879) Venezuela

Schizopelma

 Schizopelma bicarinatum Cambridge, 1897) Mexico, Central America  
 Schizopelma masculinum (Strand, 1907)  Guatemala  
 Schizopelma sorkini (Smith, 1995) Mexico

Selenobrachys

 Selenobrachys philippinus (Schmidt, 1999) Philippines

Selenocosmia

 Selenocosmia arndsti (Schmidt & von Wirth, 1991) New Guinea  
 Selenocosmia aruana (Strand, 1911) Aru Is.   
 Selenocosmia compta (Kulczynski, 1911) New Guinea  
 Selenocosmia crassipes (L. Koch, 1874) Queensland  
 Selenocosmia deliana (Strand, 1913) Sumatra  
 Selenocosmia dichromata (Schmidt & von Wirth, 1992) New Guinea   
 Selenocosmia effera (Simon, 1891) Moluccas  
 Selenocosmia fuliginea (Thorell, 1895) Myanmar  
 Selenocosmia hasselti (Simon, 1891) Sumatra  
 Selenocosmia hirtipes (Strand, 1913) Moluccas, New Guinea  
 Selenocosmia honesta (Hirst, 1909)  New Guinea  
 Selenocosmia imbellis (Simon, 1891) Borneo   
 Selenocosmia insignis (Simon, in Hasselt, 1890) Sumatra  
 Selenocosmia insulana (Hirst, 1909)  Sulawesi   
 Selenocosmia javanensis (Walckenaer, 1837) Malaysia to Sulawesi  
 Selenocosmia javanensis brachyplectra (Kulczynski, 1908)  Java  
 Selenocosmia javanensis dolichoplectra (Kulczynski, 1908)  Java  
 Selenocosmia javanensis fulva (Kulczynski, 1908)  Java  
 Selenocosmia javanensis sumatrana (Strand, 1907)  Sumatra  
 Selenocosmia kovariki (Schmidt & Krause, 1995) Vietnam    
 Selenocosmia kulluensis (Chamberlin, 1917)  India  
 Selenocosmia lanceolata (Hogg, 1914) New Guinea  
 Selenocosmia lanipes (Ausserer, 1875)  Moluccas, New Guinea  
 Selenocosmia lyra (Strand, 1913) Sumatra  
 Selenocosmia mittmannae (Barensteiner & Wehinger, 2005)   
 Selenocosmia obscura (Hirst, 1909) Borneo  
 Selenocosmia orophila (Thorell, 1897)  Myanmar  
 Selenocosmia papuana (Kulczynski, 1908)  New Guinea  
 Selenocosmia peerboomi (Schmidt, 1999) Philippines  
 Selenocosmia pritami (Dyal, 1935)  India  
 Selenocosmia raciborskii (Kulczynski, 1908) Java  
 Selenocosmia samarae (Giltay, 1935) Philippines   
 Selenocosmia similis (Kulczynski, 1911) New Guinea   
 Selenocosmia stirlingi (Hogg, 1901) Australia  
 Selenocosmia strenua (Thorell, 1881) New Guinea, Queensland  
 Selenocosmia strubelli (Strand, 1913) Java, Moluccas or New Guinea  
 Selenocosmia subvulpina (Strand, 1907) Queensland  
 Selenocosmia sutherlandi (Gravely, 1935)  India  
 Selenocosmia tahanensis (Abraham, 1924) Malaysia  
 Selenocosmia valida (Thorell, 1881) New Guinea

Selenogyrus

 Selenogyrus africanus (Simon, 1887) Ivory Coast  
 Selenogyrus aureus (Pocock, 1897) Sierra Leone  
 Selenogyrus austini (Smith, 1990) Sierra Leone  
 Selenogyrus brunneus (Strand, 1907) West Africa  
 Selenogyrus caeruleus (Pocock, 1897)  Sierra Leone

Selenotholus

 Selenotholus foelschei (Hogg, 1902) Northern Territory

Selenotypus

 Selenotypus plumipes (Pocock, 1895) Queensland

Sericopelma

 Sericopelma commune (Cambridge, 1897)  Panama  
 Sericopelma dota (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Sericopelma fallax (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Sericopelma ferrugineum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Sericopelma generala (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Sericopelma immensum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Sericopelma melanotarsum (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Sericopelma rubronitens (Ausserer, 1875) Central America  
 Sericopelma silvicola (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Sericopelma striatum (Ausserer, 1871) Venezuela  
 Sericopelma upala (Valerio, 1980) Costa Rica

Sickius

 Sickius longibulbi (Soares & Camargo, 1948) Brazil

Sphaerobothria

 Sphaerobothria hoffmanni (Karsch, 1879) Costa Rica

Stichoplastoris

 Stichoplastoris angustatus (Kraus, 1955) El Salvador  
 Stichoplastoris asterix (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Stichoplastoris denticulatus (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Stichoplastoris elusinus (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Stichoplastoris longistylus (Kraus, 1955) El Salvador  
 Stichoplastoris obelix (Valerio, 1980) Costa Rica  
 Stichoplastoris schusterae (Kraus, 1955) El Salvador  
 Stichoplastoris stylipus (Valerio, 1982) Costa Rica, Panama

Stromatopelma

 Stromatopelma batesi (Pocock, 1902) Cameroon, Congo  
 Stromatopelma calceatum (Fabricius, 1793) West Africa  
 Stromatopelma calceatum griseipes (Pocock, 1897) West Africa  
 Stromatopelma fumigatum (Pocock, 1899) Río Muni  
 Stromatopelma satanas (Berland, 1917) Gabon, Congo

Tapinauchenius

 Tapinauchenius brunneus (Schmidt, 1995) Brazil  
 Tapinauchenius cupreus (Schmidt & Bauer, 1996) Ecuador  
 Tapinauchenius elenae (Schmidt, 1994) Ecuador  
 Tapinauchenius gigas (Caporiacco, 1954) French Guiana  
 Tapinauchenius latipes (L. Koch, in Ausserer, 1875) Venezuela  
 Tapinauchenius plumipes (C. L. Koch, 1842) Surinam  
 Tapinauchenius purpureus (Schmidt, 1995) French Guiana  
 Tapinauchenius sanctivincenti (Walckenaer, 1837) St. Vincent  
 Tapinauchenius subcaeruleus (Bauer & Antonelli, 1997) Ecuador

Theraphosa

 Theraphosa apophysis (Tinter, 1991) Venezuela  
 Theraphosa blondi (Latreille, 1804) Venezuela, Brazil, Guyana

Thrigmopoeus

 Thrigmopoeus insignis (Pocock, 1899) India  
 Thrigmopoeus truculentus (Pocock, 1899) India

Thrixopelma

 Thrixopelma cyaneolum (Schmidt, Friebolin & Friebolin, 2005) Peru  
 Thrixopelma ockerti (Schmidt, 1994) Peru  
 Thrixopelma pruriens (Schmidt, 1998) Chile

Tmesiphantes

 Tmesiphantes chickeringi (Caporiacco, 1955) Venezuela  
 Tmesiphantes minensis (Mello-Leitao, 1943) Brazil  
 Tmesiphantes nubilus (Simon, 1892) Brazil  
 Tmesiphantes physopus (Mello-Leitao, 1926) Brazil

Trichognathella

 Trichognathella schoenlandi (Pocock, 1900) South Africa

Vitalius

 Vitalius buecherli (Bertani, 2001) Brazil  
 Vitalius dubius (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Vitalius longisternalis (Bertani, 2001) Brazil  
 Vitalius lucasae (Bertani, 2001) Brazil  
 Vitalius paranaensis (Bertani, 2001) Brazil, Argentina  
 Vitalius roseus (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Vitalius sorocabae (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Vitalius vellutinus (Mello-Leitao, 1923) Brazil  
 Vitalius wacketi (Mello-Leitao, 1923) Brazil

Xenesthis

 Xenesthis immanis (Ausserer, 1875) Panama to Venezuela  
 Xenesthis intermedia (Schiapelli & Gerschman, 1945) Venezuela  
 Xenesthis monstrosa (Pocock, 1903) Colombia

Yamia

 Yamia bundokalbo (Barrion & Litsinger, 1995) Philippines  
 Yamia muta (Giltay, 1935) Philippines  
 Yamia watasei (Kishida, 1920) Taiwan

 

(19 - количество проголосовавших)

Наружное строение паука-птицееда

По фотографиям и живым паукам-птицеедам хорошо заметно, что паук как бы состоит из двух частей – prosoma (головогрудь) и opisthosoma (брюшко) соедененные друг с другом тонкой перемычкой, которая называется – pedicel ножка или стебель. Давайте рассмотрим строение паука-птицееда.

altalt

У пауков птицеедов нет внутреннего скелета как у человека, зато у них есть наружный скелет, который покрывает всю поверхность паука и называется этот скелет exoskeleton (экзоскелетом) - это хитинизированная кутикула со слоем подстилающих клеток hypodermis (гиподерма), которые тщательно скрыты под хитином. Если рассматривать покров паука, то видно, что скелет более твердый на ногах, головогруди и хелицерах. На брюшке и на сочленении ног он эластичный.

Одними из наиболее важных элементов в составе экзоскелета являются:

  1. Хитин (азотный полисахарид)
  2. Склеротин (белок)

Благодаря этим веществам в совокупности скелет стал весьма прочной защитой.

Функции экзоскелета:

  1. Функция, благодаря которой паук может двигаться, поскольку к нему прикреплено большинство мускулов паука. Без экзоскелета паук был бы мягким.
  2. Сохранение влаги и защита от механических воздействий. Экзоскелет помогает удерживать влагу паука и защищает мягкие внутренние органы от внешних воздействий.
  3. Осязательная, сенсорная. На экзоскелете находится множество мелких волосков, благодаря которым паук чувствует окружающую среду.
  4. Защитная – брюшко некоторых видов пауков покрыто множеством мелких волосков, которые паук счесывает с себя и которые при попадании на кожу, глаза или дыхательные пути, вызывают раздражение.

Просома (головогрудь) - это одна из наиболее важных частей тела паука-птицееда. В ней расположен мозг и основные мускулы, а именно: мускулы отвечающие за передвижение, мускулы управляющие хелицерами и мускулы сосущего желудка. Если можно так сказать головогрудь это центр паука, так как именно к ней крепится большинство частей тела, таких как: брюшко, хелицеры, ноги.

Кроме того на карапаксе – холмике (верхней части) головогруди расположены глаза, обычно четыре пары и вдавливание по середине карапаса к которому крепятся мускулы, у некоторых видов не видно вдавливания, зато отчетливо виден небольшой рог.

Грудина (sternum) – нижняя часто головогруди. В нижней части находятся две ячейки sigilli (сигилла), функции которых до сих пор не известны. В верхней части (это та которая ближе к хелицерам) практически у основания хелицер имеются два неподвижных сегмента их еще называют нижняя и верхняя губа – labium (rostrum) и labrum. С боков головогруди находятся базальные сегменты ног (соха) тазики.

К передней части прекреплены хелицеры.

Все перечисленные части тела соединены гибкой эластичной мембраной (pleurae) и покрыты плотным слоем щетинок и волосков, намного меньше чем щетинок.

Еще одна немаловажная часть тела паука это Опистосома (брюшко или абдомен) в данной части тела паука находится множество органов, которые отвечают за: пищеварение, размножение, выделение и иные функции его организма.

Если посмотреть на брюшко паука снизу, то мы увидим что у основания брюшка находится эпигинальная площадка (epiginum), которая отделена от остальной части брюшка с задней части эпигастральной бороздкой расположенной между первой парой стигм, а с передней части pedicel. Чуть ниже первой пары стигм расположена вторая пара, имеющая аналогичное строение. На самом конце брюшка паука расположены двупарные паутинные придатки ножки (spinneret). Еще немного ниже находится отверстие заднего прохода (anus).

Тела паука имеет 8 пар придатков:

1. Хелицеры (сhelicera) – это первая пара придатков паука-птицееда, каждый отдельный придаток из этой пары состоит из двух члеников. Первый членик-это основной членик, к которому крепится второй членик (зуб) чем-то напоминающий коготь птицы. Он входит в бороздку основного членика подобно тому, как складывается складной ножик. На кончике каждого зуба открывается проток ядовитой железы, таким образом, при проколе добычи паук впрыскивает яд. Кроме того хелицеры довольно прочны и позволяют удерживать и размельчать добычу, строить норы и перетаскивать коконы. Так же хелицеры служат защитным средством от врагов.
2. Педипальпы (рedipalp) – это 2-е конечности внешне очень похожие на ноги, но имеют более меньшее членение и не участвуют при ходьбе паука, но служат органом осязания и захвата. Кроме того у половозрелых самцов педепальпы изменены и участвуют при спаривании с самкой(копулятивный аппарат). На концах педипальп у взрослых самцов находятся копулятивные органы (сymbium).

Каждый из педипальп состоит из 7 сегментов, которые соединены друг с другом эластичной мембраной. На последнем сегменте (кончик педипальпы), а точнее на него кончике находится два пучка щетинок и коготок.

Если считать сегменты от головогруди, то называются они следующим образом:

  1. coxa
  2. Trochanter
  3. Femur
  4. Patella
  5. Tibia
  6. Tarsus
  7. Pretarsus.

3-6 пары – это все ноги паука. Каждая нога, так же как и педепальп имеет 7 члеников, правда шестой членик (tarsus) разделен на два псевдосегмента, которые называются- basitarsus и telotarsus. Кроме того в отличии от педепальпы на ноге 2 крючка вместо оного. У половозрелых самцов почти всех видов пятый сегмент первой, а иногда и второй пары ног несет на себе шпоры (крючки), как правило, с нижней части, но бывают и боковые в сторону центра. Данное приспособление помогает удерживать хелицеры самки при спаривании.

На ногах, так же как и на педепальпах паука имеется множество различного рода волосков и щетинок, большая часть которых выполняет обонятельные и осязательные функции. Но есть и такие волоски, которые расположены на самих 6 и 7 члениках, с нижней стороны, они сгруппированы в специальные подушечки (scopulae), благодаря которым пауки могут взбираться по вертикальным поверхностям, включая стенки террариума. Данные волоски хорошо видны, если посмотреть паука с низу, тем более, что они имеют сине-зеленый или металлический отлив.

7-8 пары – это паутинные придатки (spinneret), они единственные из придатков, которые расположены на абдомене паука-птицееда. Из этих придатков лишь одна пара хорошо выряжена (удлиненные ножки), вторая практически не видна, но все же если присмотреться ее можно заметить (маленькие бугорки). Соединяясь с паутинными железами, обе пары, выделяют паутину. Паутинные железы занимают значительную часть места в абдомене паука. Паутина играет большую роль в жизни паука и по своему химическому составу схожа с составом шелка шелкопряда, отличие лишь в том, что в паутине паука более малая доля склеивающего вещества, которое называется серецином. В основе паутины паука-птицееда лежит протеин (fibroin), который образуется из альбуминов, альфа-аланина и глютаминовой кислоты.

Внутреннее строение паука-птицееда

Внутренние органы паука-птицееда заключены во внешний скелет (экзоскелет), но кроме того у паука имеется целая система различных элементов выполняющих роль скелета, для органов – эндоскелет (endoskeleton).

alt

alt

Эндоскелет

И так, рассмотрим, из чего он состоит, и какие функции несет в себе эндоскелет.

  1. Аподема (apodeme) – это серединное вдавливание, находящееся на головогруди непосредственно на самом карапасе паука (tergal apodeme) к которому крепятся мускулы сосущего желудочка. В теле паука-птицееда также имеются и другие аподемы, которые имеют важную роль - они связывают продольные и поперечные мускульные нити паука-птицееда с экзоскелетом (полые структуры).
  2. Энтостернум (entosternum) – еще одно дополнение к мускульной системе, состоит из вещества похожего на хрящ. Самый крупный, из энтостернумов это энтостернум просомы (prosomal entosternum) имеет форму подковы и располагается над мозгом паука.
  3. Апофизис (apophysis)

Нервная система и органы чувств

Мозг (ganglion) – это центральный орган нервной системы паука-птицееда, который располагается в нижней части головогруди. Мозг паука-птицееда состоит из двух частей: верхней и нижней (подпищеводный). Верхний мозг получает информацию от зрительных и других нервов. Нижний мозг, большего размера и имеет звездообразную форму. Нижний мозг выполняет основные моторные функции, отвечая за инстинкты и рефлексы паука-птицееда. В мозгу также находятся несколько железистых тел, выделяющих регулирующие гормоны. Данные тела сходны с гипоталамусом человека.

Ко всем органам головогруди паука-птицееда протянуты нервные нити, но лишь одна тянется в брюшко паука, которая проподает через pedicel.

Различные клетки покровного эпителия пауков образуют органы чувств.

  1. Глаза (ocella), глаза паука находятся на так называемой глазной площадке холмике (tubercle), которая находится на верху, передней части головогруди. Всего у паука 4 пары простых глаз, которые связаны с мозгом с помощью зрительных нервов. Но глаза являются не главным органом чувств, у пауков, так как зрение у них плохое, особенно если дело касается норных видов, тем более, что большую часть жизни пауки проводят в темноте, опираясь при этом на осязательные органы чувств.

  2. Волоски. Все тело паука покрыто множеством волосков, к большинству из них подведены нервные окончания. Выделяют две группы волосков - trichobothria и setae, данные волоски находятся в спецеальных углублениях экзоскелета. благодаря чему пауки могут улавливать малейшие дуновения ветра, вот почему пауки не любят когда на них дуют. Большинство данных волосков находится на педипальпах и чуть меньше на ногах.

  3. Лировидные органы (sensillae) – это микроскопические щели в экзоскелете ног, затянутые тонкой мембраной, к которой подходят чувствительные нервные клетки.

  4. Тарзальные органы (tarsal) – данные органы находятся на педипальпах и первой паре ног.

  5. Вкусовые – расположены в на стенках глотки.

На пауках-птицеедах также имеются и другие микроструктуры, значение которых до сих пор мало изучено.

Пищеварительная система

У пауков-птицеедов, подобно другим паукам «внешнекишечное пищеварение».

Ротовая полость паука-птицееда находится между хелицерами узкой, расширяющейся кпереди трубкой пищевода (pharynx), данная трубка проходит через мозг и соединяется с сосущим желудком, который в свою очередь соединяется короткой трубочкой с истинным желудком, от истинного желудка идет кишка, которая через pedicel проходит в брюшко паука. В брюшке паука-птицееда имеется сеть нитеподобных органов, так называемые мальпигиевые канальцы, которые соединены с кишкой. Данные органы несут в себе выделительную функцию, подобную почкам человека.

Перед заднепроходным отверстием (anus), которое находится над паутинными придатками, находится прямая кишка, образующая в свою очередь стеркоральный карман, имеющий мешкообразную форму.

Пауки-птицееды – это единственные пауки, которые пережевывают пищу своими мощными хелицерами, а затем, уже с помощью сосущего желудочка впрыскивают пищеварительный сок и всасывают обратно растворенную жидкую кашицу. Частицы пищи, имеют совсем крошечные размеры. С помощью многочисленных щетинок в основании хелицер и сегментов соха педипальп, более крупные частицы отсеиваются, это обычно крылья насекомых, кости, шкурки и прочие части корма, которые не растворились с помощью пищеварительного сока. Через сосущий желудочек, уже растворенная пища попадает в истинный желудок, где частично переваривается, но завершающий процесс пищеварения пауков-птицеедов проходит в кишке. С помощью мальпигиевых канальцев. После того как пища полностью переварилась весь питательный запас скапливается в стрекоральном кармане. В организме паука так же имеется орган, назначение которого было определено не так давно (1991году) учеными Тэйлор и Батт, они выяснили, что данный орган, расположенный в основании первого сегмента саха первой и третей пары ног. Данный орган называется коакциальные гланды, они выделяют жидкость, подобную человеческой слюне, которая способствует пищеварению, кроме того этот орган несет в себе солеобменную функцию в организме паука.

Трудно усвояемые частицы кормовых объектов (хитин насекомых и т.д.) и излишки солей время от времени выходят через задний проход в виде белых экскрементов (гуанин) и темных.

Кровеносная и дыхательная система

У пауков-птицеедов кровеносная и дыхательная система тесно взаимосвязаны, правда, у пауков-птицеедов, в отличие от некоторых других пауков, трахейная система отсутствует. Зато у пауков имеется две пары легких (книжные легкие) – это название они получили из-за того, что структура легких представляет собой пластинообразные тонкие мембраны (lamella), которые напоминают книжные страницы, внутри этих мембран циркулирует гемолимфа, с помощью которой углекислый газ замещается кислородом, который паук получает из воздуха. Легкие пауков-птицеедов открываются с нижней части брюшка, с продольными разделениями (stomata, stigmata), ближе к головогруди. Мембраны соединены между собой множеством мелких перемычек. Легкие у пауков образовались из брюшных жаберных ножек, которые имелись у их дальних водных предков.

Пауки-птицееды имеют незамкнутую кровеносную систему. Разветвляющаяся сеть сосудов идет по всему телу и заканчивается в тканях тела, откуда гемолимфа просачиваясь, попадает обратно в сосуды. В кровеносной системе пауков-птицеедов циркулирует гемолимфа. В составе гемолимфы имеется несущий кислород пигмент – hemocyanin (гемоцианин), который содержит медь (к примеру, человеческий гемоглобин содержит железо). В гемолимфе так же присутствуют четыре типа клеток – гемоцитов, функции которых до сих пор не известны. Гемолимфа имеет серо-синий цвет и обладает свойствами яда. Если ввести ее в организм мелких млекопитающих, то они погибнут (подобное свойство имеет и гемолимфа скорпионов).

Сердце птицеедов находятся в центре верхней части брюшка и представляет собой длинный трубчатый орган. У некоторых пауков нового света его можно увидеть, если на верхней части брюшка счесаны волоски. Сердце пауков находится в перикардии – трубчатой камере, которая охватывает сердце упругими связками. Благодаря этим связкам гемолимфа циркулирует в кровеносной системе паука. На поверхности перикардия находится множество нервных волокон, которые вызывают и регулируют сокращения сердца.

Вдоль всего сердца открываются четыре пары отверстий, остий (ostia), данные отверстия, при сокращениях работают как клапаны, через которые под давлением проходит гемолимфа в обе стороны.

Во время сокращения перикардия, гемолимфа направляется по трем направлениям: в бока, вперед (через переднюю аорту) и назад (через заднюю аорту).

Сосуды, которые отходят от задней аорты, насыщают органы брюшной полости. Гемолимфа которая идет обратно в сердце направляется перикардием через переднюю аорту, сквозь pedicel в головогрудь, откуда в свою очередь, через артериальные сосуды, поступает в органы и ткани. В тканях она собирается и затем возвращается тем же путем обратно в брюшко, после чего попадает в легкие, где насыщается кислородом. После газообмена гемолимфа из легких направляется обратно в сердце и скапливается в перикарде, после чего она начинает свой путь по второму кругу.

Половая система

У самки имеются парные яичники, которые выносятся в матку, та в свою очередь открывается яйцевыводным отверстием (gonopore), данное отверстие прикрыто складчатым возвышением – epiginum (эпигина). Кроме того в области эпигины открываются канальцы, которые связаны с кармановидным семяприёмником – spermatheca. Данный «карман» сохраняет сперму в самке после копуляции с самцом. Расположение и форма сперматеки является одним из видовых определительных признаков.

У самцов внутренняя половая система, также как и у самок парная. Она представляет собой парные семенники, извитые семяпроводы соеденяющиеся в единый проток возле щелевидного полового отверстия (gonopore), которое открывается под обдоменом, так называемой, эпигастральной бороздкой между первой парой легких. Область кпереди от данной бороздки называется эпигинальной площадкой (epiginum).

Копулятивные (совокупительные) органы самца.

Копулятивные органы появляются у самцов в момент половозрелой линьки. Это довольно сложный орган, который имеет форму луковицы со слегка изогнутым вершком. Основная часть данного органа по науке так и называется луковица (bulbus), верхняя часть этой луковицы называется эмболюс (embolus). Педипальп (tarsus) самца в отличие от самки, более короткий и имеет с копулятивным аппаратом подвижное сочленение. В голени (tibia) педипальп самца находится специальное углубление (alveolus), которое повторяет форму копулятивного органа, что не удивительно, так как копулятивный орган в обычном состоянии находится именно в этом углублении. Копулятивный орган выводится из углубления лишь в момент спаривания и в момент, когда самец заправляет спермой свои бульбы. У некоторых видов самцов на педипальпах имеются специальные выросты (тибиальные шпоры или крючки), данные отростки служат для фиксации хелицер самки во время спаривания.

 

(10 - количество проголосовавших)

 

 

 

 

        Статья временно отсутствует!